11 febrero 2009

BRICOLAJE reducir la población de caracoles

reducir la población de caracoles



Pues después de un tiempo probando diversos métodos para reducir (que no exterminar porque creo que nos reportan beneficios en cuanto a limpieza se refiere y por consiguiente con los nitratos) la población de caracoles he encontrado esta trampa de la marca SERA.

Se trata de una estructura/caja de plástico donde dos de los lados tienen unas perforaciones por donde pondremos unos palitos también de plástico a una cierta distancia los unos de los otros de manera que según los acerquemos o alejemos permitiremos que entren caracoles más o menos grandes.
Si nos fijamos, en el centro de la trampa hay un objeto rojo. En la última foto podéis ver mejor cómo es. Ahí es donde pondremos el 'cebo' para atraer los caracoles. Podemos utilizar cualquier comida para peces en forma de comprimido (pastilla). Yo particularmente uso espirulina en comprimidos y bueno, en esta foto podéis ver la pesca de una noche.
En esta foto se ven las perforaciones que os comentaba. Los palitos de plástico que se ven amontonados a un lado en la tercera foto son los que se ponen ahí.
A continuación podemos ver otra serie de palitos también de plástico inclinados a modo de cortinilla. La función de éstos es sencilla. Permite que los caracoles pasen levántandolos cuando empujan en su avance
pero una vez han entrado ya no podrán salir. Por eso están inclinados contra el suelo de la t
rampa, para que el propio suelo haga tope y no permita el movimiento de los palitos en sentido inverso al que entraron.









En estas tomas se puede ver el resultado de una noche. La verdad es que funciona a las mil maravillas.

10 febrero 2009

ARTICULO reganochromis calliurus

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reganochromis calliurus
paratilapia calliura
boulenger 1901
whitley 1929

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INTRODUCCION
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Unico representante del género monotípico reganochromis, es parte de la familia cichlidae, de la subfamilia pseudocrenilabrinae, de la tribu ectodini y de la subtribu limnochromina, toma su nombre de un científico del museo de historia natural de Londres, Charles T. Regan. Se trata de una especie endémica del lago Tanganyika, omnívora aunque su principal alimento son los pequeños peces y crustáceos y que habita las aguas costeras profundas y fangosas, hasta unos 100 metros. El tamaño máximo que alcanzan son los 15 cm. aproximadamente (dentro del grupo de los limnochromis donde se encuadran son de los más pequeños) y las diferencias sexuales son mínimas, parece que los machos desarrollan una especie de verruga en el labio inferior.
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Es una especie monógama que se reproduce mediante la incubación biparental donde tanto la madre y el padre alternan tanto la incubación de los huevos (cosa que dura en torno a 8 días) como la protección primero de las larvas (por cierto pequeñísimas en su inicio) y luego de los alevines. Pueden llegar a tener hasta 60 alevines.
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Pez tranquilo y pacífico que requiere compañeros de acuario también tranquilos y es aconsejable mantener sólo una pareja ya que son bastante intolerantes entre ellos. Un acuario de a partir de 250 litros ya es un buen lugar donde alojarlos. A Enrique le ha ido muy mantenerlos precisamente en un Atman de 250 litros con cyprichromis y altolamprologus aunque en mi opinión si queremos disfrutar luego de la suelta y recogida de alevines los altolamprologus aunque en un principio no estorben luego pueden convertirse en un peligro. En general lo mejor será tener a la pareja con la prole solos porque hasta los cyprichromis darán caza a los pequeños una vez comiencen a aventurarse solos.
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A diferencia de los demás limnochromis (acostumbrados a la construcción de túneles) a los reganochromis les gusta más reproducirse en cuevas oscuras. En el acuario les vendrá muy bien poner tejas. De hecho un síntoma de que se ha producido la formación de una pareja es observar quienes comparten cueva. Cuando veamos que dos individuos salen juntos de una cueva será el momento de separar al resto.
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Una buena alimentación será a base de cyclops, mysis, shrimp, etc... La artemia congelada se la comen muy bien.
Durante la incubación observaremos que los padres recogen algo de comida. No es ni más ni menos que para que coman los alevines.
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La cronología de una puesta se puede resumir más o menos de la siguiente manera:
  • La puesta. La incubación es iniciada por la madre.
  • La madre incuba los huevos durante las primeras 48 horas.
  • A partir de este momento se producen los intercambios diarios de la puesta entre madre y padre a razón de unas 12 horas más menos cada uno.
  • Seguirán así unos 13-14 días hasta que comienzan las sueltas. Será en este momento cuando ya podamos ver escenas de los papás con los alevines, (ver vídeos).
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Fuentes:

podéis ver más aquí

01 febrero 2009

ALBUM aulonocranus dewindti

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aulonocranus dewindti
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macho de aulonocranus



estas dos tomas son del macho en pleno cortejo




a continuación podemos ver una hembra incubando:





30 enero 2009

nueva plantilla

nueva plantilla


Bueno, pues después de echarle valor al tema, he decidido cambiar de plantilla. Digo valor porque me daba miedo cagarla y cargarme todo lo que había hecho hasta ahora pero la verdad es que ha sido más fácil de lo que esperaba. Gracias Pedro (pemart) por el tutorial para torpes que me hiciste, si no es por tus instrucciones no hago este cambio ni de coña. Joder, cuando iba al instituto controlaba todo lo que tenía que ver con los ordenadores y ahora me doy cuenta que me he quedao obsoleto, no me entero.
El caso es que me apetecía poner alguna plantilla en la que predominase el negro y que tuviese tres columnas y después de todo el santo día poniendo y quitando plantillas me he decidido por esta. No me mata pero es la que más se ajusta de las que he visto en la extensa colección que hay en la web que nos comenta Pedro en su blog http://btemplates.com/.
Pues de momento así va. Al cambiar de plantillas pierdes todos los gatches así que ahora estoy volviéndolos a poner.

23 enero 2009

ARTICULO julidochromis dickfeldi


julidochromis dickfeldi
wolfgang staeck 1975






El julidochromis dickfeldi, conocido también como 'julie brown' fué descrito por Wolfgang Staeck en 1975. Se trata de una variedad endémica del lago Tanganyika localizado en una relativamente pequeña zona al suroeste entre Moliro y Cape Kachese.

Se trata de un cíclido no muy grande, alcanza en torno a los 10 cm. Por lo que lo hace ideal para acuarios pequeños. El sexado es muy difícil aunque parece ser que las hembras son algo mayores que los machos.

El biotopo que ocupa es el rocoso y parece ser que una vez que consiguen su territorio no se mueven demasiado, digamos que son algo estáticos. En el acuario una vez que establezcan su territorio rara vez se aventurarán a moverse fuera de él.

Se recomienda una vez creada una pareja retirar al resto de miembros porque se mostrarán muy agresivos con sus congéneres.

Se puede observar que este pez tiene la boca apuntando hacia abajo. Esto se debe a que en estado salvaje se alimentan de crustáceos y otros animales que encuentran en las rocas así que no será de extrañar que no veamos a este pez acudir a la superficie cuando echemos de comer al acuario.

Una vez que se ha formado la pareja buscará una cueva que preparará para la puesta poco tiempo después. Comenzarán con una gran actividad, (sacando arena y demás), hasta que llegue un momento que los veamos menos, será cuando estén guardando los huevos que pondrán en el techo o en una pared fuera de la vista. Los alevines al nacer son bastante pequeños pero tendrán la protección de unos buenos padres que los tolerarán hasta bien creciditos, de hecho se pueden juntar varias generaciones de hijos. Una vez producida la primera puesta habrán sucesivas cada 25-30 días.

Se trata de una variedad muy similar al julidochromis ornatus. El cuerpo es de color marrón claro a amarillo con res franjas laterales. La banda superior se extiende a lo largo de la cresta de la espalda a la base de la aleta caudal. La banda más baja se extiende desde la boca, a través de la parte inferior del iris de los ojos, a la aleta caudal. La aleta dorsal es de un color gris oscuro a negro con una serie de pequeños puntos de color blanco-amarillento. Las aletas caudal y anal tienen el mismo patrón de coloración. Las aletas pélvicas son violetas.



Fuentes:
http://fish.mongabay.com/species/Julidochromis_dickfeldi.html
http://www.gcca.net/fom/Julidochromis_dickfeldi.htm
http://www.kerrigansaquatics.com/dickfeldi.htm
http://www.waterfall.hu/_build/write_halfajok.asp?searchstring=julidochromis%20dickfeldi

08 enero 2009

FICHA aulonocranus dewindti

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aulonocranus dewindti

boulenger 1899










1.- INTRODUCCION:

- Se trata del featherfins más común del hábitat arenoso intermedio allí donde se mezcla la arena con rocas y conchas vacías en un intervalo de profundidad aproximado de 1,5m a 5m.

- Tiene poros sensoriales en la cabeza, a semejanza del aulonocara del Malawi, que le ayudan a detectar crutáceos y larvas de insectos escondidos en la arena.

2.- EN EL ACUARIO:

- Se puede mantener varios machos en un acuario siempre que éste sea grande, de lo contrario lo ideal será mantener un macho y varias hembras. En mi experiencia particular, en un acuario de 300L (120x50x50) el ratio que tengo (1/2) se queda corto, creo que un par de hembras más sería lo suyo.

- Es importante proporcionar escondites suficientes porque el macho dominante acosa demasiado a las hembras y machos dominados. El macho se va a pasar en el acuario todo el día en celo y su manera de cortejar a las hembras es a base de continuas carreras y topazos, parece esa su forma de estimulación y preparación de las hembras. Este es el motivo por el que digo que el acuario para albergar al dewindti debe ser lo más largo posible.

- Puede ser recomendable mantener más de un macho en el acuario para que el dominante se centre un poco en él y se suavice el presing que sufren las hembras. Esto aun no lo he probado pero será la medida que tome si veo que las hembras pierden puestas por el continuo acoso al que son sometidas. Me parece que puede ser una medida de distracción para el dominante el meter un machete ya que la amenaza del dominio hará que centre en él parte de su atención.








3.- CORTEJO Y PUESTA:

- El macho construirá un gran nido, normalmente contra una o más rocas, en cautividad lo podrá hacer incluso contra el cristal, que medirá en torno a 25-30 cm. de diámetro y puede llegar a alcanzar sobre los 15 cm. de alto, donde atraerá a las hembras que permanecen en colonias de cría unos 50 cm. por encima del sustrato. El nido lo construirá poco a poco con una gran delicadeza y sutileza que contrasta con el carácter duro y potente o pendenciero del pez. El nido siempre estará limpio de cualquier partícula que no sea la propia arena.

- Se trata de un incubador bucal materno. Una vez que la hembra suelte la puesta es recomendable que los alevines pasen en torno a 10 días con la madre ya que esos primeros días son críticos para ellos y necesitas de su protección. Parece ser que los alevines en sus primeros estadios son muy delicados.

- Si los mantenemos con una dieta nutritiva adecuada pueden experimentar un crecimiento de unos 2 cm. en 4 semanas.




En estas dos fotos podemos ver cómo es un nido de aulonocranus, eso sí, en sus primeras fases porque como veremos dentro de unos días eso crece mucho más.

El macho se dedicará a recoger arena de cualquier parte del acuario y con mucha tranquilidad y sutileza irá poco a poco levantando el nido.




















4.- ALIMENTACION:


- En estado salvaje se alimentan de crustáceos y larvas de insectos que detectan en la arena gracias a sus poros sensoriales.


- En cautividad aceptan bien todo tipo de comida ya sea escamas, gránulos o comida congelada. Es importante también un aporte vegetal como la espirulina.


5.- EL AGUA:


- Pues la habitual del lago, un agua dura y alcalina donde el ph debe rondar los 8,2º.


- La temperatura ideal para este pez es de 24ºC a 26ºC.


6.- OTROS:


- Amplia distribución geográfica, tenemos las variedades de Burundi, Zambia y Tanzania.


- El crecimiento que alcanza esta especie es unos 14 cm. aproximadamente para los machos. Algo menos para las hembras.




fotos del aulonocranus en su entorno natural

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Fuentes: